核酸电泳常用缓冲液配制方法(一)

一、50×TAE Buffer (pH8.5)

配制方法：先将Tris和Na2EDTA•2H2O在800ml超纯水中搅拌溶解，后加入乙酸并充分搅拌，用超纯水定容至1L即可。

二、10×TBE Buffer (pH8.3)

配制方法：先将上述试剂在800ml超纯水中搅拌溶解，再用超纯水定容至1L即可。

三、10×MOPS(3-吗啉基丙磺酸)Buffer

配制方法：

1.先将MOPS在700ml DEPC处理水中搅拌溶解，用2N NaOH调节PH至7.0;

2.再向溶液中加入NaOAc和EDTA，纯化水定容至1L;

3.用0.45μm滤膜过滤，室温避光保存。

注：溶液见光或高温灭菌后会变黄。变黄时也可使用，但变黑时不要使用。

四、溴乙锭 (10 mg/ml)

配制方法：

1.先将溴乙锭在100ml去离子水中搅拌至完全溶解（约数小时），后转移至棕色瓶中室温避光保存。

2.使用时的工作浓度是0.5g/ml

3.溴乙锭是一种致癌物质，须注意安全。

五、6 × Loading Buffer(DNA电泳用)

配制方法：

1.先将除甘油外的其他试剂在200ml去离子水中加热搅拌至充分溶解

2.再加入甘油180ml，用2N NaOH调节PH至7.0;

3.定容至500ml，室温保存。

六、10 × Loadlng Buffer (RNA电泳用)

配制方法：

1.先将上述试剂加入有约4ml DEPC处理水的离心管中，充分搅拌溶解；

2.再加入甘油5ml，充分混匀；

3.定容至10ml，室温保存。